Tylopilus felleus

Tylopilus felleus

Classificação científica
Domínio: Eukaryota
Reino: Fungi
Filo: Basidiomycota
Classe: Agaricomycetes
Ordem: Boletales
Família: Boletaceae
Género: Tylopilus
Espécie: T. felleus
Nome binomial
Tylopilus felleus
(Bull.) P.Karst. (1881)
Sinónimos[1][2]
  • Boletus felleus Bull. (1788)
  • Boletus alutarius Fr. (1815)
  • Boletus alutarius Rostk. (1844)
  • Tylopilus felleus var. alutarius (Fr.) P.Karst. (1882)
  • Dictyopus felleus (Fr.) Quél. (1886)
  • Rhodoporus felleus (Fr.) Quél. (1888)
  • Tylopilus alutarius (Fr.) Henn. (1898)
  • Boletus felleus var. minor Coker & Beers (1943)
  • Tylopilus felleus var. uliginosus A.H.Sm. & Thiers (1971)
  • Tylopilus felleus var. minor (Coker & Beers) Pilát & Dermek (1974)
Tylopilus felleus
float
float
Características micológicas
Himênio poroso
Píleo é convexo
Lamela é adnata
Estipe é nua
A cor do esporo é castanho-rosado 
  a rosa
A relação ecológica é micorrízica
Comestibilidade: comestível 
  ou comestível mas intragável

Tylopilus felleus é uma espécie de fungo da família Boletaceae. O micologista francês Pierre Bulliard descreveu esta espécie como Boletus felleus em 1788, antes de ser transferida para o novo gênero Tylopilus [en]. É a espécie-tipo de Tylopilus e o único membro do gênero que é encontrado na Europa.

Os basidiomas apresentam píleos convexos a planos, de tonalidade marrom, bege ou castanho-claro, medindo tipicamente até 15 cm de diâmetro. A superfície porosa é inicialmente branca, tornando-se rosada com a idade. Como a maioria dos boletos, não possui anel e pode ser distinguido de Boletus edulis e espécies semelhantes pelos poros rosados incomuns e pelo padrão reticulado marrom-escuro proeminente no estipe.

Sua distribuição inclui o leste da Ásia, Europa e leste da América do Norte, estendendo-se ao sul até o México e América Central. Espécie micorrízica, cresce em bosques decíduos e de coníferas, frequentemente frutificando sob faias e carvalhos. Foi objeto de pesquisas sobre compostos bioativos testados quanto a propriedades antitumorais e antibióticas. Embora não seja venenoso, é geralmente considerado não comestível devido ao seu amargor intenso.

Taxonomia

A espécie foi descrita pela primeira vez na literatura científica como le bolet chicotin (Boletus felleus) pelo micologista francês Pierre Bulliard em 1788.[3] À medida que o grande gênero Boletus foi subdividido em gêneros menores, Petter Karsten transferiu-a em 1881 para Tylopilus,[4] um gênero caracterizado pelos esporos rosados e tubos adnatos.[5] Tylopilus felleus é a espécie-tipo de Tylopilus e o único membro do gênero encontrado na Europa. Sinônimos incluem Boletus alutarius, descrito por Elias Magnus Fries em 1815[6] e posteriormente por Friedrich Wilhelm Gottlieb Rostkovius em 1844, e a transferência subsequente do táxon de Fries para Tylopilus por Paul Christoph Hennings, T. alutarius.[1][7] Lucien Quélet colocou o táxon em Dictyopus em 1886 e depois em Rhodoporus em 1888,[2] mas nenhum desses gêneros é reconhecido atualmente, tendo o primeiro sido incorporado a Boletus e o segundo a Tylopilus.[8] Análise genética publicada em 2013 demonstra que T. felleus e muitos (mas não todos) outros membros de Tylopilus formam um clado Tylopilus dentro de um grupo maior informalmente chamado anaxoboletus em Boletineae. Outros clados no grupo incluem os clados dos porcini e Strobilomyces, além de três outros grupos compostos por membros de vários gêneros, incluindo Xerocomus, Xerocomellus e Imleria badia e parentes.[9]

Uma variedade descrita da região dos Grandes Lagos, var. uliginosus, foi reconhecida por Alexander H. Smith e Harry D. Thiers em 1971 com base em suas características microscópicas,[2] distinção apoiada pelo professor C.B. Wolfe da Universidade Estadual da Pennsylvania.[10] No entanto, o Index Fungorum não considera este um táxon independente.[1] Da mesma forma, Boletus felleus var. minor, publicada originalmente por William Chambers Coker e A.H. Beers em 1943[11] (posteriormente transferida para Tylopilus por Albert Pilát e Aurel Dermek em 1974),[12] foi incorporada à sinonímia de T. felleus.[1] Charles Horton Peck descreveu Boletus felleus var. obesus em 1889,[13] mas não existe registro de holótipo.[14] Embora existam registros de T. felleus na Austrália, seus esporos têm dimensões consistentemente menores e este táxon foi classificado como espécie separada, T. brevisporus.[15]

Tylopilus felleus deriva o nome do gênero do grego antigo tylos "protuberância" e pilos "píleo" e o epíteto específico do latim fel significando "bile", referindo-se ao seu sabor amargo, semelhante à bile.[5]

Descrição

Os tubos, inicialmente brancos quando jovens, tornam-se rosa sujo na maturidade.
A reticulação grossa marrom é característica da superfície do estipe.

O píleo desta espécie cresce até 15 cm de diâmetro,[5] embora alguns espécimes norte-americanos atinjam 30 cm de largura.[2] É cinza-amarelado a marrom-claro ou marrom-noz, ligeiramente felpudo no início e posteriormente torna-se liso com brilho opaco. É inicialmente convexo antes de aplanar com a maturidade.[5] A pileipellis não se desprende da carne.[16] Os poros por baixo são brancos no início e tornam-se rosados com a maturidade. São adnatos ao estipe e curvam-se para baixo à medida que o cogumelo envelhece.[17] Os poros mancham de carmim ou acastanhado,[18] frequentemente desenvolvendo manchas marrom-avermelhadas com a idade,[19] e existem cerca de um ou dois por milímetro.[20] Os tubos são longos em relação ao tamanho do píleo, medindo 2–3 cm de profundidade na parte média do píleo.[19] O estipe é inicialmente bulboso antes de alongar e afinar na parte superior; a parte inferior do estipe permanece inchada, por vezes encolhendo na base onde se fixa ao substrato;[19] mede 7–10 cm — raramente até 20 cm[2] — de altura, e 2–3 cm de largura, podendo inchar até 6 cm na base.[17] É mais claro que o píleo e coberto por uma rede grossa de marcas marrons,[17] que foram comparadas à aparência de meias arrastão.[18] Descrito como "muito apetitoso" na aparência,[21] a carne é branca ou creme e rosa sob a pileipellis; a carne também pode desenvolver tons rosados onde foi cortada.[22] Possui odor leve,[16] descrito como agradável,[5][23] bem como ligeiramente desagradável.[17][18] A carne é mais macia que a de outros boletos,[18] e tende a tornar-se mais esponjosa à medida que o cogumelo amadurece.[19] É intensamente amarga[24] e raramente infestada por insetos.[16]

several partly transparent oval objects in a microscope field
Esporos observados ao microscópio óptico

A cor da esporada é acastanhada com tom avermelhado ou rosado.[24] Os esporos são fusiformes, lisos e medem 11–17 por 3–5 µm.[20] Os basídios (células portadoras de esporos) são clavados, tetraspóricos e medem 18–25,6 por 7,0–10,2 µm. Os cistídios nas paredes dos tubos (pleurocistídios) são fusiformes com inchaço central, de parede fina e com conteúdos granulares. Possuem pontas afiadas a cônicas e dimensões gerais de 36–44 por 8,0–11,0 µm. Nas bordas dos poros, os queilocistídios são semelhantes em forma aos pleurocistídios, medindo 24,8–44,0 por 7,3–11,0 µm.[25] O himênio da variedade uliginosus de Smith e Thiers, quando montado em reagente de Melzer, mostra glóbulos avermelhados de pigmento medindo 2–8 µm nas hifas e por todo o himênio, e um grande glóbulo (8–12 µm) nos pleurocistídios.[2]

Vários testes químicos foram documentados que podem ajudar a confirmar a identificação desta espécie. Na carne do píleo, a aplicação de formaldeído torna o tecido rosado, sais de ferro resultam em mudança para cinza-esverdeado, anilina causa cor lavanda a marrom-avermelhada, e fenol cor púrpura-rosada a marrom-avermelhada. Na pileipellis, ácido nítrico causa cor laranja-salmão, ácido sulfúrico cria laranja-avermelhado, amônia geralmente torna marrom e solução de hidróxido de potássio geralmente torna laranja.[26]

Espécies semelhantes

Boletus edulis
Tylopilus rubrobrunneus

O cozinheiro e autor italiano Antonio Carluccio relata que este é um dos fungos mais comuns trazidos para ele identificar, tendo sido confundido como espécie comestível.[27] Exemplares jovens podem ser confundidos com muitos boletos comestíveis, embora à medida que os poros se tornam mais rosados a espécie fique mais fácil de identificar. Alguns guias recomendam provar a carne, cujo menor pedaço será muito amargo.[18] A reticulação escura sobre clara no estipe é distintiva e tem coloração oposta à do estipe do prezado Boletus edulis.[27] T. felleus é encontrado no mesmo habitat que I. badia, embora os tubos amarelos e a carne que mancha de azul deste último distingam facilmente essas espécies. Xerocomus subtomentosus pode ter píleo de cor semelhante, mas seus poros amarelos e estipe delgado ajudam na identificação.[21]

A espécie Tylopilus rubrobrunneus, encontrada em florestas de madeira dura no leste da América do Norte, é semelhante em aparência a T. felleus, mas possui píleo púrpura a marrom-púrpura.[22] Também não é comestível devido ao seu sabor amargo.[25] Outra espécie norte-americana, T. variobrunneus, apresenta píleo marrom-avermelhado a castanho, com tons oliva na juventude. Possui esporos menores que T. felleus, tipicamente medindo 9–13 por 3–4,5 µm. No campo, pode ser distinguida desta última espécie pelo sabor suave a ligeiramente amargo.[28] T. rhoadsiae [en], encontrada no sudeste dos Estados Unidos, possui píleo mais claro e menor, até 9 cm de diâmetro.[29] As comestíveis T. indecisus e T. ferrugineus podem ser confundidas com T. felleus, mas possuem estipes menos reticulados.[2] As dimensões dos esporos da espécie australiana T. brevisporus variam de 9,2 a 10,5 por 3,5 a 3,9 µm.[15] T. neofelleus, de distribuição limitada a florestas decíduas da China, Nova Guiné, Japão e Taiwan, pode ser distinguida de T. felleus macroscopicamente pelo píleo marrom-vináceo e estipe marrom-rosado a vinho e microscopicamente pelos esporos menores (medindo 11–14 por 4–5 µm) e pleurocistídios mais longos (49–107 por 14–24 µm).[30]

Ecologia, distribuição e habitat

Two somewhat dingy-looking brownish mushrooms with brown bruising in moss.
Na maturidade, os poros frequentemente apresentam manchas marrons, enquanto a superfície dos poros se projeta para baixo

Como todas as espécies de Tylopilus, T. felleus é micorrízica.[31] Encontra-se em bosques decíduos e de coníferas, frequentemente sob faias e carvalhos[22] em solos ácidos bem drenados,[32] que podem ser arenosos, pedregosos ou turfosos.[21] Se encontrado em solo calcário, será em áreas úmidas que ficaram encharcadas e com abundante serrapilheira.[5] Os cogumelos crescem isolados ou em pequenos grupos, e ocasionalmente em pequenos tufos com dois ou três unidos na base do estipe.[19] Basidiomas também foram encontrados crescendo em cavidades de árvores velhas,[19] em tocos velhos de coníferas ou em madeira podre enterrada.[31] O fungo obtém a maior parte de suas necessidades de nitrogênio de aminoácidos derivados da degradação de proteínas, embora uma quantidade menor seja obtida do amino açúcar glucosamina (um produto de degradação da quitina, componente principal das paredes celulares fúngicas). O parceiro vegetal micorrízico beneficia-se da capacidade do fungo de usar essas formas de nitrogênio, que frequentemente são abundantes no solo florestal.[33] Os cogumelos aparecem no verão e outono, a qualquer momento de junho a outubro ou mesmo em novembro, em muitas zonas temperadas do norte.[20][16] Grandes quantidades podem aparecer em alguns anos e nenhuma em outros,[21] geralmente proporcional à quantidade de chuvas.[16] A variedade uliginosus, conhecida de Michigan, cresce entre liquens e musgos sob pinheiros.[2]

Na América do Norte, é conhecida do leste do Canadá, ao sul até a Flórida e a oeste até Minnesota nos Estados Unidos[20] e até o México e América Central.[22] Sua distribuição europeia é ampla; é relativamente comum em muitas regiões, mas rara ou quase ausente em outras.[19] Na Ásia, foi registrada nas proximidades de Dashkin no distrito de Astore, no norte do Paquistão[34] e até o leste na China, onde foi registrada em Hebei, Jiangsu, Fujian, Guangdong e Sichuan,[35] e na Coreia.[36]

O sabor forte dos cogumelos pode ter algum papel em evitar insetos.[37] A pequena mosca Megaselia pygmaeoides alimenta-se e infesta os basidiomas de T. felleus na América do Norte, embora pareça preferir outros boletos na Europa.[37] Os basidiomas podem ser parasitados pelo bolor Sepedonium ampullosporum.[38] A infecção resulta em necrose do tecido do cogumelo e cor amarela causada pela formação de grandes quantidades de aleurioconídios pigmentados (conídios unicelulares produzidos por extrusão a partir dos conidióforos).[39]

A bactéria Paenibacillus tylopili foi isolada da micorrizosfera de T. felleus; esta é a região ao redor de suas hifas subterrâneas onde nutrientes liberados pelo fungo afetam a atividade da população microbiana no solo. A bactéria excreta enzimas que permitem decompor a biomolécula quitina.[40]

Os basidiomas de T. felleus têm alta capacidade de acumular césio radioativo (137Cs) de solo contaminado, característica atribuída à penetração profunda no solo alcançada pelo micélio.[41] Em contraste, a espécie tem capacidade limitada de acumular o isótopo radioativo polônio-210 (210Po).[42]

Comestibilidade

Mesmo quando cozido tem um cheiro maravilhoso, mas provar o cogumelo (Tylopilus felleus) não só desapontaria como talvez deprimisse o caçador de cogumelos novato.

Edible Wild Mushrooms of North America:
A Field-To-Kitchen Guide[43]

O sabor é extremamente amargo, embora não seja tóxico. Esse amargor piora com o cozimento.[18] Um único espécime pode estragar o sabor de uma refeição inteira preparada com cogumelos.[16] Apesar disso, é vendido em feiras (tianguis) no México.[44][45] Uma receita local da França, Romênia e Alemanha Oriental recomenda cozinhá-lo em leite desnatado, após o que pode ser consumido ou reduzido a pó para tempero.[16] O cogumelo não é amargo para aqueles que não possuem sensibilidade genética ao sabor amargo,[20] traço conferido pelo gene TAS2R38 [en] (receptor de sabor 2 membro 38).[46] O composto responsável pelo sabor amargo não foi identificado.[47]

Pesquisas

O micélio de Tylopilus felleus pode ser cultivado em cultura axênica, em ágar contendo meio de crescimento. O fungo pode formar basidiomas se a temperatura for adequada e as condições de luz simularem um dia de 12 horas. Os cogumelos geralmente são deformados, frequentemente sem estipes, de modo que o píleo cresce diretamente na superfície, e os píleos geralmente medem 0,5–1,0 cm de diâmetro. Há poucas espécies de Boletaceae conhecidas por frutificar em cultura, já que fungos ectomicorrízicos tendem a não frutificar quando separados da planta hospedeira.[48]

Compostos de T. felleus foram extraídos e pesquisados quanto a usos médicos potenciais.[18] O tilopilano é um beta-glucano isolado dos basidiomas em 1988 e demonstrado ter propriedades citotóxicas em testes laboratoriais[49] e estimular uma resposta imunológica não específica. Em particular, potencializa a fagocitose, processo pelo qual macrófagos e granulócitos englobam e digerem bactérias estranhas.[50] Em experimentos com camundongos com células tumorais, pareceu ter efeitos antitumorais quando administrado em combinação com uma preparação de Cutibacterium acnes em um estudo polonês de 1994.[51] Pesquisadores em 2004 relataram que extratos do basidioma inibem a enzima lipase pancreática; foi o segundo mais inibitório entre 100 cogumelos testados. Um composto presente no cogumelo, N-γ-glutamil boletina, tem atividade antibacteriana leve.[52]

Ver também

Referências

  1. ↑ a b c d «Synonymy: Tylopilus felleus (Bull.) P. Karst., Revue mycol., Toulouse 3(no. 9): 16 (1881)». Species Fungorum. CAB International. Consultado em 31 de dezembro de 2025 
  2. ↑ a b c d e f g h Smith AH, Thiers HD (1971). The Boletes of Michigan. Ann Arbor: The University of Michigan Press. pp. 112–15 
  3. ↑ Bulliard JBF. (1788). Herbier de la France (em francês). 8. Paris: Chez l'auteur, Didot, Debure, Belin. plate 379 
  4. ↑ Karsten PA. (1881). «Enumeratio Boletinearum et Polyporearum Fennicarum, systemate novo dispositarum». Revue Mycologique Toulouse. 3 (9): 16–19 
  5. ↑ a b c d e f Nilson S, Persson O (1977). Fungi of Northern Europe 1: Larger Fungi (Excluding Gill-Fungi). Harmondsworth: Penguin. pp. 102–03. ISBN 978-0-14-063005-3 
  6. ↑ Fries EM. (1815). Observationes mycologicae (em latim). 1. Copenhagen: Gerh. Bonnier. p. 115 
  7. ↑ Engler A, Prantl K (1900). Die natürlichen Pflanzenfamilien nebst ihren Gattungen und wichtigeren Arten insbesondere den Nutzpflanzen : I. Tl., 1. Abt.: Fungi (Eumycetes) (em alemão). Teil 1, Abt.1**. Leipzig: Engelmann. p. 190 
  8. ↑ Kirk PM, Cannon PF, Minter DW, Stalpers JA (2008). Dictionary of the Fungi 10th ed. Wallingford: CAB International. pp. 206, 601. ISBN 978-0-85199-826-8 
  9. ↑ Nuhn ME, Binder M, Taylor AF, Halling RE, Hibbett DS (2013). «Phylogenetic overview of the Boletineae». Fungal Biology. 117 (7–8): 479–511. PMID 23931115. doi:10.1016/j.funbio.2013.04.008 
  10. ↑ Wolfe CB Jr. (1991). «Type studies in Tylopilus (Boletaceae). V. Taxa described by Alexander H. Smith, Harry D. Thiers, and Samuel J. Mazzer». Canadian Journal of Botany. 69 (8): 1833–38. Bibcode:1991CaJB...69.1833W. doi:10.1139/b91-233 
  11. ↑ Coker WC, Beers AH (1943). The Boletaceae of North Carolina. Chapel Hill: University of North Carolina Press. p. 17 
  12. ↑ Pilát A, Dermek A (1974). Hríbovité huby (em checo). Bratislava: vydavateľstvo Slovenskej akadémie vied. p. 132 
  13. ↑ Peck CH. (1889). «Boleti of the United States». Bulletin of the New York State Museum. 2 (8): 73–166 (see p. 154) 
  14. ↑ Wolfe CB Jr. (1981). «Type studies in Tylopilus (Boletaceae). I. Taxa described by Charles H. Peck» (PDF). Sydowia Annales Mycologici. 34: 199–213 
  15. ↑ a b Watling R, Hui LT (1999). Australian Boletes: A Preliminary Survey. Edinburgh: Royal Botanic Garden Edinburgh. p. 54. ISBN 978-1-872291-28-4 
  16. ↑ a b c d e f g Zeitlmayr L. (1976). Wild Mushrooms: An Illustrated Handbook. Hertfordshire: Garden City Press. pp. 97–98. ISBN 978-0-584-10324-3 
  17. ↑ a b c d Phillips R. (2006). Mushrooms. London: Pan MacMillan. p. 287. ISBN 978-0-330-44237-4 
  18. ↑ a b c d e f g Lamaison JL, Polese JM (2005). The Great Encyclopedia of Mushrooms. Cologne: Könemann. p. 27. ISBN 978-3-8331-1239-3 
  19. ↑ a b c d e f g Alessio CL. (1985). Boletus Dill. ex L. (sensu lato) (em italiano). Saronno: Biella Giovanna. pp. 91–96 
  20. ↑ a b c d e Bessette AE, Roody WC, Bessette AR (2000). North American Boletes. Syracuse: Syracuse University Press. pp. 263–64. ISBN 978-0-8156-0588-1 
  21. ↑ a b c d Haas H. (1969). The Young Specialist looks at Fungi. London: Burke. p. 34. ISBN 978-0-222-79409-3 
  22. ↑ a b c d Roberts P, Evans S (2011). The Book of Fungi. Chicago: University of Chicago Press. p. 361. ISBN 978-0-226-72117-0 
  23. ↑ Phillips R. (2005). Mushrooms and Other Fungi of North America. Buffalo: Firefly Books. p. 284. ISBN 978-1-55407-115-9 
  24. ↑ a b Audubon (2023). Mushrooms of North America. [S.l.]: Knopf. 363 páginas. ISBN 978-0-593-31998-7 
  25. ↑ a b Ammirati JF, Traquair JA, Horgen PA (1985). Poisonous Mushrooms of Canada: Including other Inedible Fungi. Markham: Fitzhenry & Whiteside, Agriculture Canada e Canadian Government Publishing Centre, Supply and Services Canada. pp. 334–35. ISBN 978-0-88902-977-4 
  26. ↑ Grund DW, Harrison KA (1976). Nova Scotian Boletes. Col: Bibliotheca Mycologia. 47. Lehre: J. Cramer. p. 201. ISBN 978-3-7682-1062-1 
  27. ↑ a b Carluccio A. (2003). The Complete Mushroom Book. London: Quadrille. p. 38. ISBN 978-1-84400-040-1 
  28. ↑ Roody WC. (2003). Mushrooms of West Virginia and the Central Appalachians. Lexington: University Press of Kentucky. p. 312. ISBN 978-0-8131-9039-6 
  29. ↑ Bessette AE, Roody WC, Bessette AR (2007). Mushrooms of the Southeastern United States. Syracuse: Syracuse University Press. pp. 241–42. ISBN 978-0-8156-3112-5 
  30. ↑ Chen CM, Ho YS, Chou WN, Lin TC (2004). «Four Tylopilus species (Boletaceae) new to Taiwan» (PDF). Taiwania. 49 (2): 109–17. Arquivado do original (PDF) em 2 de abril de 2015 
  31. ↑ a b Miller HR, Miller OK (2006). North American Mushrooms: A Field Guide to Edible and Inedible Fungi. Guilford: Falcon Guide. pp. 376–77. ISBN 978-0-7627-3109-1 
  32. ↑ Laessoe T. (2002). Mushrooms. Col: Smithsonian Handbooks 2nd ed. London: Dorling Kindersley Adult. p. 186. ISBN 978-0-7894-8986-9 
  33. ↑ Wu T, Kabir Z, Koide RT (2005). «A possible role for saprotrophic microfungi in the N nutrition of ectomycorrhizal Pinus resinosa». Soil Biology and Biochemistry. 37 (5): 965–75. Bibcode:2005SBiBi..37..965W. doi:10.1016/j.soilbio.2004.10.015 
  34. ↑ Sarwar S, Khalid AN (2013). «Preliminary Checklist of Boletales in Pakistan» (PDF). Mycotaxon: 1–12 
  35. ↑ Bi Zhishu; Guoyang Zheng; Li Taihui (1993). The Macrofungus Flora of China's Guangdong Province. Hong Kong: Chinese University Press. pp. 480–81. ISBN 978-962-201-556-2 
  36. ↑ Hong-Duck S, Tae-Chul H, Sung-Cheol J, Sung-Hyun J, Hyun P (2011). «Analysis of environmental characteristics in habitat of Amanita hemibapha». Korean Journal of Mycology (em coreano). 39 (3): 164–70. doi:10.4489/KJM.2010.39.3.164Acessível livremente  publicação de acesso livre - leitura gratuita
  37. ↑ a b Bruns T. (1984). «Insect mycophagy in the Boletales: Fungivore diversity and the mushroom habitat». In: Wheeler Q, Blackwell M. Fungus-Insect Relationships: Perspectives in Ecology and Evolution. New York: Columbia University Press. pp. 91–129 (see pp. 99, 113). ISBN 978-0-231-05694-6 
  38. ↑ Ammer H, Besl H, Vilsmeier S (1997). «Der Flaschensporige Goldschimmel, Sepedonium ampullosporum – ein thermophiler Parasit an Pilzfruchtkörpern der Ordnung Boletales» [Sepedonium ampullosporum, a thermophilic hyphomycete parasitizing fruit-bodies of Boletales]. Zeitschrift für Mykologie (em alemão). 63 (2): 127–32. ISSN 0170-110X 
  39. ↑ Neuhof T, Berg A, Besl H, Schweche T, Dieckmann R, von Döhren H (2007). «Peptaibol production by Sepedonium strains parasitizing Boletales». Chemistry & Biodiversity. 4 (6): 1103–15. PMID 17589879. doi:10.1002/cbdv.200790099 
  40. ↑ Kuisiene N, Raugalas J, Spröer C, Kroppenstedt RM, Stuknyte M, Chitavichius D (2008). «Paenibacillus tylopili sp.nov., a chitinolytic bacterium isolated from the mycorhizosphere of Tylopilus felleus». Folia Microbiologica. 53 (5): 433–37. PMID 19085079. doi:10.1007/s12223-008-0066-2 
  41. ↑ Tsvetnova OB, Shcheglov AI (2009). «137Cs in natural ecosystem components within the 30-km impact zone of the Smolensk nuclear power plant». Moscow University Soil Science Bulletin. 64 (3): 99–104. Bibcode:2009MUSSB..64...99T. doi:10.3103/S0147687409030016 
  42. ↑ Skwarzec B, Jakusic A (2003). «210Po bioaccumulation by mushrooms from Poland». Journal of Environmental Monitoring. 5 (5): 791–94. PMID 14587851. doi:10.1039/B304881K 
  43. ↑ Bessette A, Fischer DH (1992). Edible Wild Mushrooms of North America: A Field-to-Kitchen Guide. Austin: University of Texas Press. p. 164. ISBN 978-0-292-72080-0 
  44. ↑ Boa E. (2004). Wild Edible Fungi: A Global Overview of Their Use and Importance to People. Col: Non-Wood Forest Products. 17. Rome: Food & Agriculture Organization of the UN. p. 147. ISBN 978-92-5-105157-3 
  45. ↑ Dugan FM. (2011). Conspectus of World Ethnomycology. St. Paul: American Phytopathological Society. p. 77. ISBN 978-0-89054-395-5 
  46. ↑ Tepper BJ. (2008). «Nutritional implications of genetic taste variation: the role of PROP sensitivity and other taste phenotypes». Annual Review of Nutrition. 28: 367–88. PMID 18407743. doi:10.1146/annurev.nutr.28.061807.155458 
  47. ↑ Spiteller P. (2008). «Chemical defence strategies of higher fungi». Chemistry – A European Journal. 14 (30): 9100–10. Bibcode:2008ChEuJ..14.9100S. PMID 18601235. doi:10.1002/chem.200800292 
  48. ↑ McLaughlin DJ. (1974). «Fruitbody formation by Tylopilus fellus in axenic culture». Mycologia. 66 (1): 197–202. JSTOR 3758474. doi:10.2307/3758474 
  49. ↑ Defaye J, Kohlmunzer S, Sodzawiczny K, Wong E (1988). «Structure of an antitumor, water-soluble D-glucan from the carpophores of Tylopilus felleus». Carbohydrate Research. 173 (2): 316–23. doi:10.1016/S0008-6215(00)90829-2 
  50. ↑ Kucharska E, Bober J (2004). «Fungal polysaccharides as immunostimulators». Advances in Agricultural Sciences. 9: 91–101. ISSN 1230-1353 
  51. ↑ Grzybek J, Zgórniaknowosielska I, Kasprowicz A, Zawilińska B, Kohlmunzer S (1994). «Antitumor activity of a fungal glucan tylopilan and Propionibacterium acnes preparation» (PDF). Acta Societatis Botanicorum Poloniae. 63 (3–4): 293–98. doi:10.5586/asbp.1994.040Acessível livremente 
  52. ↑ Rogers RD. (2006). The Fungal Pharmacy: Medicinal Mushrooms of Western Canada. Edmonton: Prairie Diva Press. p. 206. ISBN 978-0-9781358-1-2 
Este artigo é emitido por Wikipédia. O texto é licenciado sob Creative Commons Attribution-Share Alike 4.0. Termos adicionais podem ser aplicados aos arquivos de mídia.